James J. Ferguson, Bala Rathinasabapathi, e Carlene A. Chase2

O que é a alelopatia?

Allelopatia refere-se aos efeitos benéficos ou prejudiciais de uma planta sobre outra planta, tanto da cultura como das espécies de ervas daninhas, pela liberação de bioquímicos, conhecidos como aleloquímicos, de partes da planta por lixiviação, exsudação radicular, volatilização, decomposição de resíduos e outros processos, tanto no sistema natural como no sistema agrícola. Os alleoquímicos são um subconjunto de metabólitos secundários não necessários para o metabolismo (crescimento e desenvolvimento) do organismo allelopático. Allelochemicals with negative allelopathic effects are an important part of plant defense against herbivory (i.e., animals eating plants as their primary food) (Fraenkel 1959; Stamp 2003).

O termo allelochemicals with negative allelopathic effects are an important part of plant defense against herbivory (i.e., animals eating plants as their primary food) (Fraenkel 1959; Stamp 2003).

O termo allelochemicals is from the Greek-derived compounds allelo and pathy (meaning “mutual harm” or “suffering”) and was first used in 1937 by Austrian scientist Hans Molisch in the book Der Einfluss einer Pflanze auf die andere – Allelopathie (The Effect of Plants on each other) (Willis 2010). Primeiro amplamente estudado em sistemas florestais, a alelopatia pode afetar muitos aspectos da ecologia vegetal, incluindo ocorrência, crescimento, sucessão vegetal, estrutura das comunidades vegetais, dominância, diversidade e produtividade das plantas. Inicialmente, muitas das espécies florestais avaliadas tiveram efeitos alelopáticos negativos sobre as culturas alimentares e forrageiras, mas nos anos 80 iniciou-se uma pesquisa para identificar espécies que tiveram efeitos benéficos, neutros ou seletivos sobre as plantas de culturas companheiras (Tabela 1). As primeiras pesquisas surgiram a partir de observações de má regeneração das espécies florestais, danos às culturas, reduções de produção, problemas de replantio de culturas arbóreas, ocorrência de zonas livres de ervas daninhas, e outras mudanças relacionadas aos padrões de vegetação. Nosso propósito aqui é introduzir o conceito de alelopatia, citar exemplos específicos e mencionar aplicações potenciais como uma estratégia alternativa de manejo de ervas daninhas.

Natureza da alelopatia

Efeitos comumente citados da alelopatia incluem a redução da germinação das sementes e do crescimento das plântulas. Como os herbicidas sintéticos, não há um modo de ação comum ou local alvo fisiológico para todos os alloquímicos. Entretanto, os locais de ação conhecidos para alguns alloquímicos incluem divisão celular, germinação do pólen, absorção de nutrientes, fotossíntese, e função enzimática específica. Por exemplo, um estudo que examinou o efeito de um alloquímico conhecido em veludo, 3-(3′,4′-dihidroxifenil)-alanina (l-DOPA), indicou que a inibição por este composto é devida a efeitos adversos no metabolismo de aminoácidos e no equilíbrio da concentração de ferro.

A inibição allelopática é complexa e pode envolver a interação de diferentes classes de produtos químicos, como compostos fenólicos, flavonóides, terpenóides, alcalóides, esteróides, carboidratos e aminoácidos, com misturas de diferentes compostos às vezes tendo um efeito allelopático maior do que os compostos individuais isoladamente. Além disso, tensões fisiológicas e ambientais, pragas e doenças, radiação solar, herbicidas e níveis de nutrientes, umidade e temperatura inferiores aos ideais também podem afetar a supressão de ervas daninhas alelopáticas. Diferentes partes das plantas, incluindo flores, folhas, folhagem e palha, caules, casca, raízes, solo e lixiviados do solo e seus compostos derivados, podem ter atividade alelopática que varia ao longo de uma estação de crescimento. Os produtos químicos alelopáticos ou aleloquímicos também podem persistir no solo, afetando tanto as plantas vizinhas quanto as plantadas em sucessão. Embora derivados de plantas, os aleloquímicos podem ser mais biodegradáveis que os herbicidas tradicionais, mas os aleloquímicos também podem ter efeitos indesejáveis em espécies não-alvo, necessitando de estudos ecológicos antes do uso generalizado.

Atividade seletiva de aleloquímicos de árvores em culturas e outras plantas também tem sido relatada. Por exemplo, Leucaena leucocephala, a árvore milagrosa promovida para revegetação, conservação do solo e da água, e nutrição animal na Índia, contém em suas folhas um aminoácido tóxico, não proteico, que inibe o crescimento de outras árvores, mas não de suas próprias mudas. As espécies de Leucaena também demonstraram reduzir o rendimento do trigo, mas aumentar o rendimento do arroz. Os lixiviados da árvore casta ou ancião caixa podem retardar o crescimento do pangolagrass mas estimulam o crescimento do blueste m, outra erva de pasto. Muitas plantas invasoras podem ter alelopatia como uma característica para o seu sucesso ecológico. Um estudo na China descobriu que 25 das 33 ervas daninhas altamente nocivas rastreadas tinham um potencial alelopático significativo.

Tempo, condições ambientais, e tecido vegetal, todos fatores em variações nas concentrações alloquímicas na planta produtora. Os lixiviados foliares e foliares das espécies de Eucalyptus, por exemplo, são mais tóxicos do que os lixiviados de casca para algumas culturas alimentares. O potencial aleloopático da videira (Ipomoea cairica) é significativamente maior a temperaturas ambientais mais elevadas. Um estudo indicou que a biota do solo reduziu o potencial alelopático da serpente pegajosa (Ageratina adenophora). A festuca vermelha infectada por um endófito fúngico produziu mais aleloquímicos do que plantas não infectadas.

Estratégias de Pesquisa e Aplicações Potenciais

A abordagem básica usada na pesquisa alelopática para culturas agrícolas tem sido a triagem tanto das plantas cultivadas quanto da vegetação natural para sua capacidade de suprimir ervas daninhas. Para demonstrar a aleloopatia, a origem vegetal, a produção e a identificação de aleloquímicos deve ser estabelecida, assim como a persistência no ambiente ao longo do tempo em concentrações suficientes para afetar as espécies vegetais. Em laboratório, extratos vegetais e lixiviados são comumente rastreados para seus efeitos na germinação de sementes com maior isolamento e identificação de aleloquímicos de testes em estufa e solo de campo, confirmando os resultados de laboratório. Também devem ser consideradas as interações entre plantas alelopáticas, culturas hospedeiras e outros organismos não-alvo. Além disso, a aleloquímica pode fornecer estruturas básicas ou modelos para o desenvolvimento de novos herbicidas sintéticos. Estudos têm elucidado allochequímicos específicos envolvidos na supressão de ervas daninhas, incluindo benzoxanóides no centeio; momilactonas diterpenóides no arroz; tabanona no cogumelo; alcalóides e flavonóides na festuca; antratectona e naftoctona em teca (Tectona grandis); ácido abscísico beta-d-glucopiranosil em pinheiro vermelho; cianamida em ervilhaca peluda; e um ácido gordo ciclopropeno em esterculia de aveleira (Sterculia foetida).

Incorporação de traços alelopáticos de plantas silvestres ou cultivadas em plantas cultivadas através de métodos tradicionais de reprodução ou engenharia genética também poderia melhorar a biossíntese e a liberação de alloquímicos. A base genética da alelopatia foi agora demonstrada no trigo e arroz de inverno. Cultivares específicas com potencial alelopático aumentado são conhecidas em ambas as culturas.

Uma cultura alelopática pode potencialmente ser usada para controlar ervas daninhas plantando uma variedade com qualidades alelopáticas, seja como uma cultura mais sufocante, em uma seqüência rotacional, ou quando deixada como resíduo ou cobertura morta, especialmente em sistemas de plantio baixo, para controlar o crescimento subseqüente de ervas daninhas. Por exemplo, em um estudo, a cobertura morta de centeio teve efeitos supressores sobre as ervas daninhas e o arroio comum, mas não teve efeitos sobre a folha de veludo e os quartos de cordeiros comuns. Uma cultura de cobertura de Outono de rabanete forrageiro teve efeitos supressores de ervas daninhas na cultura da estação seguinte. Num estudo de campo multi-estação, quando aplicado como emenda do solo, a farinha de mostarda derivada da mostarda branca (Sinapis alba) foi eficaz para a supressão de ervas daninhas na cebola doce orgânica, mas a lesão da cultura também foi significativa.

Alternativamente, a aplicação de compostos alelopáticos antes, junto com, ou depois dos herbicidas sintéticos poderia aumentar o efeito global de ambos os materiais, reduzindo assim as taxas de aplicação de herbicidas sintéticos. Algumas tentativas têm sido relatadas na aplicação de extratos aquosos de plantas alelopáticas em culturas para supressão de ervas daninhas. Em um estudo, um extrato de brássica (Brassica napus), sorgo e girassol foi usado em trigo alimentado pela chuva para reduzir com sucesso a pressão das ervas daninhas. Quando um extrato de água de planta alelopática foi misturado com atrazina, um grau significativo de controle de ervas daninhas foi alcançado no trigo com uma dose reduzida de herbicida. Os resíduos de girassol com um herbicida pré-plantio (Treflan®) melhoraram a supressão de ervas daninhas no feijão largo.

Literatura Citada

Fraenkel, G. S. 1959. “The Raison d’Etre of Secondary Plant Substances.” Ciência 129: 1466-1470.

Stamp, N. 2003. “Fora do Quagmire das Hipóteses de Defesa Vegetal.” The Quarterly Review of Biology 78: 23-55.

Willis, R. J. 2010. A História da Allelopatia. Dordrecht, Holanda: Springer.

Recursos Adicionais

Adler, M. J., e C. A. Chase. 2007. “Comparação do Potencial Alelopático das Culturas de Capas de Leguminosas de Verão”: Cowpea, Sunn Hemp, e Velvet Bean”. HortScience 42: 289-293.

Awan, F. K., M. Rasheed, M. Ashraf, e M. Y. Khurshid. 2012. “Eficácia dos Extractos Aquosos de Brassica, Sorgo e Girassol para Controlar as Ervas Daninhas de Trigo sob Condições de Plantas Tropicais de Pothwar, Paquistão.” Journal of Animal and Plant Sciences 22: 715-721.

Bangarwa, S. K., J. K. Norsworthy, e E. E. Gbur. 2012. “Efeito da alteração do solo de nabo silvestre e da camada de nozes amarelas (Cyperus esculentus) Densidades dos tubérculos na interferência do polietileno do tomateiro”. Weed Technology 26: 364-370.

Bertholdsson, N. O., S. C. Andersson, e A. Merker. 2012. “Potencial Alelopático de Triticum spp., Secale spp. e Triticosecale spp. e Uso de Substituições e Translocações de Cromossomas para Melhorar a Capacidade de Supressão de Ervas Daninhas no Trigo de Inverno.” Reprodução de Plantas 131: 75-80.

Brooks, A. M., D. A. Danehower, J. P. Murphy, S. C. Reberg-Horton, e J. D. Burton. 2012. “Estimation of Heritability of Benzoxazinoid Production in Rye (Secale cereale) Using Gas Chromatographic Analysis”. Reprodução Vegetal 131: 104-109.

Cerdeira, A. L., C. L. Cantrell, F. E. Dayan, J. D. Byrd, e S. O. Duke. 2012. “Tabanone, a New Phytotoxic Constituent of Cogongrass (Imperata cylindrica)”. Weed Science 60: 212-218.

De Bertoldi, C., M. De Leo, e A. Ercoli. 2012. “Perfil Químico do Extracto de Festuca arundinacea mostrando Actividade Allelochequímica.” Quimioecologia 22: 13-21.

Ebrahimi, F., N. M. Hosseini, e M. B. Hosseini. 2012. “Efeitos dos Extratos de Ervas em Matéria-Raízes Vermelhas (Amaranthus retroflexus) e Quartos de Cordeiros (Chenopodium album) Ervas daninhas em Feijão Pinto (Phaseolus vulgaris)”. Jornal Iraniano de Ciência das Culturas 42: 757–766.

Farooq, M., K. Jabran, Z. Cheema, A. Wahid, e H. M. K.Siddique. 2011. “O papel da alelopatia no manejo de pragas agrícolas”. Ciência do Manejo de Pragas 67: 493-506.

Golisz, A., M. Sugano, S. Hiradate, e Y. Fujii. 2011. “Microarray Analysis of Arabidopsis Plants in Response to Allelochemical L-DOPA”. Planta 233: 231-240.

Hesammi, E., e A. Farshidi. 2012. “Estudo do Efeito Allelopático do Resíduo de Trigo no Controlo de Ervas Daninhas e Crescimento do Vetch (Vigna radiata L.)”. Avanços em Biologia Ambiental 6: 1520-1522.

Khan, M. B., M. Ahmad, M. Hussain, K. Jabran, S. Farooq, e M. Waqas-Ul-Haq. 2012. “Tanque de Extractos de Água de Planta Alelopática Misturado com Doses Reduzidas de Atrazina Controlam Eficientemente o Trianthema portulacastrum L. em Zea mays L.” Journal of Animal and Plant Sciences 22: 339-346.

Kruse, M. M. Strandberg, e B. Strandberg. 2000. Efeitos Ecológicos de Plantas Allelopáticas: Uma revisão. Relatório Técnico NERI No. 315. Silkeborg, Dinamarca: Instituto Nacional de Pesquisa Ambiental.

Inderjit, H. Evans, C. Crocoll, D. Bajpai, R. Kaur, Y. Feng, C. Silva, C. Trevino, A. Valiente-Banuet, J. Gershenzon, e R. M. Callaway. 2012. “Produtos químicos voláteis da ninhada de folhas estão associados à invasão de uma erva daninha neotropical na Ásia.” Ecologia 92: 316-324.

Lawley, Y. E., J. R. Teasdale, e R. R. Weil. 2012. “O mecanismo de supressão de ervas daninhas por uma cultura de cobertura de rabanete forrageiro.” Jornal Agronómico 104: 205-214.

Mbugwa, G. W., J. M. Krall, e D. E. Legg. 2012. “Interferência de Resíduos de Tifton Burclover com Crescimento de Burclover e Sementes de Trigo”. Diário Agronómico 104: 982-990.

Mosjidis, J. A., e G. Wehtje. 2011. “Controlo de ervas daninhas em cânhamo solar e a sua capacidade de suprimir o crescimento das ervas daninhas.” Proteção de Cultivos 30: 70-73.

Neuhoff, D., e J. Range. 2012. “Controlo de ervas daninhas por cobertura de resíduos vegetais de girassol (Helianthus annuus) e trigo sarraceno (Fagopyrum esculentum) em feijão Faba de Inverno orgânico.” Jornal de peles Kulturpflanzen 64: 229-236.

Ni, G. Y., P. Zhao, Q. Q. Huang, Y. P. Hou, C. M. Zhou, Q. P. Cao, e S. L. Peng. 2012. “Explorando a Hipótese das Novas Armas com Espécies de Plantas Invasivas na China”. Allelopathy Journal 29: 199-213.

Rani, P. U., P. Rajasekharreddy, e K. Nagaiah. 2011. “Efeitos Alelopáticos de Sterculia foetida (L.) contra Quatro Grandes Ervas Daninhas”. Allelopathy Journal 28: 179-188.

Rathinasabapathi, B., J. Ferguson, e M. Gal. 2005. “Avaliação do Potencial Allelopático de Batatas Fritas de Madeira para Supressão de Ervas Daninhas em Sistemas de Produção Horticultural”. HortScience 40:711-713.

Rizvi, S. J. H., M. Tahir, V. Rizvi, R. K. Kohli, e A. Ansari. 1999. “Interacções Alelopáticas em Sistemas Agroflorestais”. Critical Reviews in Plant Sciences 18: 773-779.

Skinner, E. M., J. C. Diaz-Perez, S. C. Phatak, H. H. Schomberg, e W. Vencill. 2012. “Efeitos alelopáticos do Sunnhemp (Crotalaria juncea L.) sobre a germinação de legumes e ervas daninhas”. HortScience 47: 138–142.

Vazquez-de-Aldana, B. R., M. Romo, A. Garcia-Ciudad, C. Petisco, e B. Garcia-Criado. 2011. “Infecção com Epichloe Endófito Fungoso Pode Alterar o Potencial Alelopático da Festuca Vermelha”. Anais de Biologia Aplicada 159: 281-290.

Xu, M., R. Galhano, P. Wiemann, E. Bueno, M. Tiernan, W. Wu, I. Chung, J. Gershenzon, B. Tudzynski, A. Sesma, e R. J. Peters. 2012. “Evidência Genética para a Alelopatia Planta-Planta Natural de Arroz (Oryza sativa)”. Novo Fitologista 193: 570–575.

Zuo, S., G. Liu, e M. Li. 2012. “Base Genética do Potencial Allelopático do Trigo de Inverno Baseado na Perspectiva do Locus do Traço Quantitativo”. Field Crops Research 135: 67-73.

Tabelas

Tabela 1.

Exemplos de alelopatias de pesquisas publicadas.

Planta alelopática

Impacto

Linha de nogueira preta interplantada com milho em sistema de cultivo em viela

Redução da produção de milho atribuída à produção de juglone, um composto alelopático de nogueira preta, encontrado 4.25 m (~14 pés) de árvores

Linhas de Leucaena interplantadas com culturas em sistema de cultivo em vielas

Reduzido o rendimento de trigo e açafrão-da-índia mas aumentado o rendimento de milho e arroz

Lantana, uma praga lenhosa perene nos citrinos da Florida

Raízes e rebentos de lantana incorporados no solo reduzem a germinação e o crescimento da vinha de algas leiteiras, outra erva daninha

Raízes de laranja azeda, um porta-enxerto de citrinos muito usado no passado, agora evitado por causa da susceptibilidade ao vírus da tristeza cítrica

Extratos de folhas e compostos voláteis inibiram a germinação de sementes e o crescimento das raízes de algas de porco, bermuda e borregos

Ácer vermelho, carvalho pantanoso, baía doce, e cedro vermelho

Extratos de madeira inibiram a semente de alface tanto ou mais do que extratos de nozes pretas

Eucalipto e neem árvores

Uma relação alelopática espacial se o trigo fosse cultivado dentro de 5 m (~16.5 pés)

Chaste árvore ou caixa ancião

Leachates retardou o crescimento do pangolagrass, um pasto, mas estimulou o crescimento do tronco azul, outra espécie de gramínea

Manga

Pó de folha de manga seco inibiu completamente a germinação de tubérculos de nozes purpúreas.

Árvore do céu

Ailantona, isolada da árvore do céu, foi relatada como possuindo atividade herbicida não seletiva pós-emergência semelhante ao glifosato e paraquat

Centeio, festuca, e trigo

Supressão alelopática de ervas daninhas quando usadas como cobertura de culturas ou quando os resíduos de culturas são retidos como palha

Brócolos

Resíduo de brócolos interfere com o crescimento de outras culturas cruciferas que se seguem

Arroz da selva

Inibição da cultura do arroz

Rábano forrageiro

Cobrir a supressão dos resíduos da cultura do ervas daninhas na estação seguinte à cultura de cobertura

Alcachoeira de Jerusalém

Efeitos residuais sobre as espécies de ervas daninhas

Sunflor e trigo sarraceno

Cobertura resíduos da cultura reduziu a pressão das ervas daninhas na cultura da fava

Tifton burclover

Inibição do crescimento no trigo e autotoxicidade no burclover

Cânhamo do sol

Inibição do crescimento da alface e da alface e inibição da germinação de sementes de vegetais

Desert horsepurslane (Trianthema portulacastrum)

Promoção do crescimento do esbelto amaranto (Amaranthus viridis)

Rhazya stricta

Inibição do crescimento do milho

Cocklebur (Xanthium strumarium)

Inibição do crescimento de mungbean

Mostarda de alho

Inibição de fungos micorrízicos arbusculares que colonizam no ácer do açúcar

Pinhão-manso (Jatropha curcas)

Extracts of leaves and roots inhibited corn and tobacco

Chicory

Inhibition of Echinochloa crusgalli and Amaranthus retroflexus

Swallow-worts

Espécies invasivas no nordeste dos Estados Unidos e sudeste do Canadá; inibiu várias espécies de ervas daninhas

Tephrosia de Vogel (Tephrosia vogelii)

Inibição do crescimento do milho e três espécies estreitas…espécies de ervas daninhas foliares

Espicho verde

Inibição do grão de bico

Crabgrass

Inibição do milho e girassol, mas sem inibição do triticale quando o resíduo seco de grama de caranguejo foi incorporado solo

Acacia dealbata (Acacia dealbata)

Inibição de espécies nativas do sub-bosque no noroeste Espanha

Sercota pegajosa (Ageratina adenophora)

Os voláteis eram inibidores de plantas em nãonativos mas não inibidores das plantas nativas

Santa Maria feverfew (Parthenium hysterophorus)

Aqueous extractos tiveram efeitos inibidores nas culturas de cereais

Madeira de corte

Extratos de folhas inibiram o arroz da selva e sedge, mas não arroz cultivado

Rabbitfoot grass

Extratos de folhas e trigo inibido por mulch

Notas de pés

Este documento é HS944, uma de uma série do Departamento de Ciências Hortícolas, Extensão UF/IFAS. Data de publicação original: Julho de 2003. Revisado em março de 2013. Revisado em agosto de 2016. Visite o site do EDIS em http://edis.ifas.ufl.edu.

James J. Ferguson, professor emérito; Bala Rathinasabapathi, professor; e Carlene A. Chase, professor associado; Departamento de Ciências Hortícolas, UF/IFAS Extensão, Gainesville, FL 32611.

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