Bloodborne Agents
Mycoplasma haemofelis (Mhf), “Candidatus Mycoplasma haemominutum” (Mhm), en “Candidatus M. turicensis” (Mtc) kunnen allen bij katten worden aangetroffen. Bij experimenteel besmette katten is Mhf blijkbaar pathogeender dan Mhm. Mtc lijkt een intermediaire pathogeniciteit te hebben. De diagnose is gebaseerd op het aantonen van het organisme op het oppervlak van erytrocyten bij onderzoek van een dunne bloedfilm of PCR-test. Het aantal organismen fluctueert en daarom kan bloedfilmpjesonderzoek tot 50% van de tijd fout-negatief zijn. Het organisme kan moeilijk cytologisch te vinden zijn, vooral in de chronische fase. PCR-tests zijn daarom de voorkeurstests vanwege de gevoeligheid.13 Er zijn primers beschikbaar die alle drie hemoplasma’s kunnen amplificeren. Real-time PCR testen kunnen worden gebruikt om het aantal kopieën tijdens en na de behandeling te controleren, maar hebben geen grotere gevoeligheid, specificiteit of voorspellende waarde dan conventionele PCR testen.32 PCR testen moeten worden overwogen bij de evaluatie van katten met onverklaarbare koorts of anemie die cytologisch negatief zijn. Bovendien beveelt het American College of Veterinary Internal Medicine (ACVIM) aan katten voor gebruik als bloeddonor te screenen met PCR-tests voor hemoplasma’s.35 Veel katten (ongeveer 15%) zijn drager van de relatief niet-pathogene Candidatus M. haemominutum, zodat positieve testresultaten niet altijd correleren met de aanwezigheid van ziekte (slechte PPV).
Katten kunnen worden geïnfecteerd door E. canis-achtige organismenm2 en Anaplasma phagocytophilum.15 Er is weinig bekend over de andere agentia in deze geslachten met betrekking tot katten. Omdat de organismen tot verschillende geslachten behoren, is de serologische kruisreactiviteit variabel. Dus hoewel de klinische syndromen vergelijkbaar kunnen zijn, is er niet één serologische test om infectie te documenteren, en er is momenteel geen gestandaardiseerde serologie voor katten. Bovendien, sommige katten met E. canis infectie seroconverteren niet, en dus, is PCR assay superieur aan serologie bij katten. PCR-tests kunnen worden ontworpen om elk organisme te amplificeren. Als alternatief zijn er primers beschikbaar om alle organismen in één reactie te amplificeren, waarna sequencing kan worden gebruikt om de besmettelijke soort te bepalen. Positieve testresultaten correleren echter niet altijd met de aanwezigheid van ziekte. Anaplasma phagocytophilum DNA is geamplificeerd uit het bloed van gezonde katten gedurende meer dan 10 weken na experimentele infectie door blootstelling aan Ixodes teken (MR Lappin, ongepubliceerde gegevens, 2011).
Katten kunnen worden geïnfecteerd door Rickettsia felis en er is aangetoond dat zij antilichamen hebben tegen R. rickettsii. Koorts, hoofdpijn, myalgie en maculaire huiduitslag bij mensen zijn toegeschreven aan R. felis infectie in verschillende landen over de hele wereld. In een recente studie in ons laboratorium hebben we 92 paren kattenbloed- en vlooiextracten uit Alabama, Maryland en Texas onderzocht, met behulp van PCR-tests die een regio van het citraatsynthase-gen (gltA) en het buitenmembraaneiwit B-gen (ompB) amplificeren. Van de 92 paren waren 62 van de 92 (67,4%) vlooiextracten en geen van de bloedmonsters van katten positief voor R. felis DNA.11 In een andere studie toonden we aan dat R. felis en R. rickettsii antilichaamprevalenties hadden bij katten met koorts van respectievelijk 5,6% en 6,6%, maar geen van beide organismen werd uit bloed geamplificeerd.1 Deze resultaten bewijzen dat katten soms worden blootgesteld, maar verdere gegevens zijn nodig om de betekenis van ziekteassociaties te bepalen. Of Rickettsia spp. PCR assays geïndiceerd zijn voor gebruik bij katten op dit moment is onbekend.
Bloedkweek, PCR assay op bloed, en serologisch onderzoek kunnen worden gebruikt om individuele katten te beoordelen op Bartonella spp. infectie.3 Katten die kweeknegatief of PCR-negatief en antilichaamnegatief zijn, en katten die kweeknegatief of PCR-negatief en antilichaampositief zijn, zijn waarschijnlijk geen bron van vlooien-, katten-, of humane infectie. Bacteriëmie kan echter intermitterend zijn en vals-negatieve kweek- of PCR-resultaten kunnen voorkomen, waardoor de voorspellende waarde van een enkele testbatterij wordt beperkt.17 Hoewel serologisch onderzoek kan worden gebruikt om vast te stellen of een individuele kat is blootgesteld, kunnen zowel seropositieve als seronegatieve katten bacteriëmisch zijn, waardoor de diagnostische bruikbaarheid van serologisch onderzoek wordt beperkt. Daarom wordt het testen van gezonde katten op Bartonella spp. momenteel niet aanbevolen.3,14 Testen moet worden gereserveerd voor katten met een vermoeden van klinische bartonellose. Omdat Bartonella spp. infectie zo vaak voorkomt bij gezonde katten, zijn zelfs kweek-positieve of PCR-positieve resultaten geen bewijs voor klinische bartonellose. Bijvoorbeeld, hoewel we Bartonella spp. DNA detecteerden in meer katten met koorts dan in paarsgewijs gematchte katten zonder koorts, waren de gezonde katten nog steeds vaak positief.16 Gecombineerde serologie met PCR bij evaluatie van katten met verdenking op bartonellose geeft waarschijnlijk de beste voorspellende waarde.
Cytauxzoon felis wordt meestal gemakkelijk geïdentificeerd bij cytologisch onderzoek van bloeduitstrijkjes of miltaspiraten tijdens de evaluatie van klinisch zieke katten. Serologisch onderzoek is op dit moment niet commercieel beschikbaar. PCR kan worden gebruikt om DNA van het organisme te amplificeren uit bloed van katten die cytologisch negatief zijn.9
Antilichamen tegen het feline immunodeficiëntievirus (FIV) worden in de klinische praktijk het vaakst in serum opgespoord met behulp van enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Vergelijkingen tussen verschillende tests hebben aangetoond dat de resultaten van de meeste assays vergelijkbaar zijn.10 Resultaten van virusisolatie of RT-PCR op bloed zijn positief bij sommige antilichaam-negatieve katten. Fout-positieve reacties kunnen voorkomen bij gebruik van ELISA; daarom moeten positieve ELISA-resultaten bij gezonde of laag-risicokatten worden bevestigd met Western blot immunoassay. Kittens kunnen gedurende verscheidene maanden detecteerbare, van colostrum afgeleide antilichamen hebben. Als de antilichamen op de leeftijd van 6 maanden blijven bestaan, is het kitten waarschijnlijk besmet. Virusisolatie of RT-PCR op bloed kan ook worden uitgevoerd om besmetting te bevestigen. FIV is echter niet in hoge concentraties in het bloed aanwezig, zodat vals-negatieve resultaten vaak voorkomen. Bovendien zijn er variabele resultaten tussen laboratoria.6
De meeste katten met feline leukemie virus infectie zijn viremisch, en dus zijn moleculair diagnostische testen meestal niet nodig in de klinische praktijk. Het gebruik van nieuwere gevoelige real-time PCR-tests is echter gebruikt om de stadia van infectie nauwkeurig te karakteriseren.19 Deze tests zijn echter niet algemeen commercieel verkrijgbaar.
RNA van zowel FIPV als FECV kan worden geamplificeerd uit het bloed van katten, en dus correleren positieve testresultaten niet altijd met de ontwikkeling van FIP. Amplificatie van het mRNA van het M-gen door RT-PCR had gemengde resultaten in twee tot nu toe uitgevoerde studies. In de ene studie waren 13 van 26 ogenschijnlijk normale katten positief voor FECV mRNA in bloed, wat suggereert dat de positief voorspellende waarde van deze test voor de diagnose van FIP laag was.5