James J. Ferguson, Bala Rathinasabapathi, und Carlene A. Chase2

Was ist Allelopathie?

Allelopathie bezieht sich auf die vorteilhaften oder schädlichen Auswirkungen einer Pflanze auf eine andere Pflanze, sowohl auf Nutzpflanzen als auch auf Unkraut, durch die Freisetzung von biochemischen Stoffen, den so genannten Allelochemikalien, aus Pflanzenteilen durch Auswaschung, Wurzelausscheidung, Verflüchtigung, Zersetzung von Rückständen und andere Prozesse sowohl in natürlichen als auch in landwirtschaftlichen Systemen. Allelochemikalien sind eine Untergruppe von Sekundärmetaboliten, die für den Stoffwechsel (Wachstum und Entwicklung) des allelopathischen Organismus nicht erforderlich sind. Allelochemikalien mit negativer allelopathischer Wirkung sind ein wichtiger Teil der pflanzlichen Abwehr gegen Herbivorie (d. h. Tiere, die Pflanzen als Hauptnahrung fressen) (Fraenkel 1959; Stamp 2003).

Der Begriff Allelopathie stammt von den griechischen Verbindungen allelo und pathy (was „gegenseitiger Schaden“ oder „Leiden“ bedeutet) und wurde erstmals 1937 vom österreichischen Wissenschaftler Hans Molisch in dem Buch Der Einfluss einer Pflanze auf die andere – Allelopathie (Willis 2010) verwendet. Die Allelopathie wurde zuerst in der Forstwirtschaft untersucht und kann viele Aspekte der Pflanzenökologie beeinflussen, darunter Vorkommen, Wachstum, Pflanzensukzession, die Struktur von Pflanzengemeinschaften, Dominanz, Vielfalt und Pflanzenproduktivität. Ursprünglich hatten viele der untersuchten forstwirtschaftlichen Arten negative allelopathische Wirkungen auf Nahrungs- und Futterpflanzen, aber in den 1980er Jahren wurde mit der Forschung begonnen, um Arten zu identifizieren, die positive, neutrale oder selektive Wirkungen auf Begleitpflanzen haben (Tabelle 1). Die frühe Forschung ergab sich aus Beobachtungen von schlechter Regeneration von Waldarten, Ernteschäden, Ertragsminderungen, Problemen bei der Wiederanpflanzung von Baumkulturen, dem Auftreten von unkrautfreien Zonen und anderen damit verbundenen Veränderungen der Vegetationsmuster. Wir wollen hier das Konzept der Allelopathie vorstellen, konkrete Beispiele anführen und auf mögliche Anwendungen als alternative Unkrautbekämpfungsstrategie hinweisen.

Natur der Allelopathie

Zu den häufig genannten Wirkungen der Allelopathie gehören eine verringerte Keimung der Samen und ein verringertes Wachstum der Sämlinge. Wie bei den synthetischen Herbiziden gibt es auch bei den Allelochemikalien keinen gemeinsamen Wirkmechanismus oder physiologischen Zielort. Zu den bekannten Wirkorten einiger Allelochemikalien gehören jedoch die Zellteilung, die Pollenkeimung, die Nährstoffaufnahme, die Photosynthese und die Funktion bestimmter Enzyme. Eine Studie, in der die Wirkung einer in der Samtbohne bekannten Allelochemikalie, 3-(3′,4′-Dihydroxyphenyl)-l-alanin (l-DOPA), untersucht wurde, deutet beispielsweise darauf hin, dass die Hemmung durch diese Verbindung auf negative Auswirkungen auf den Aminosäurestoffwechsel und das Gleichgewicht der Eisenkonzentration zurückzuführen ist.

Allelopathische Hemmung ist komplex und kann die Interaktion verschiedener Klassen von Chemikalien beinhalten, wie phenolische Verbindungen, Flavonoide, Terpenoide, Alkaloide, Steroide, Kohlenhydrate und Aminosäuren, wobei Mischungen verschiedener Verbindungen manchmal eine größere allelopathische Wirkung haben als einzelne Verbindungen allein. Darüber hinaus können auch physiologische und umweltbedingte Belastungen, Schädlinge und Krankheiten, Sonneneinstrahlung, Herbizide sowie suboptimale Nährstoff-, Feuchtigkeits- und Temperaturverhältnisse die allelopathische Unkrautunterdrückung beeinflussen. Verschiedene Pflanzenteile, darunter Blüten, Blätter, Laubstreu und Blattmulch, Stängel, Rinde, Wurzeln, Boden und Bodensickerwasser sowie die daraus gewonnenen Verbindungen, können eine allelopathische Aktivität aufweisen, die im Laufe einer Vegetationsperiode variiert. Allelopathische Chemikalien oder Allelochemikalien können auch im Boden verbleiben und sowohl benachbarte als auch nachfolgend gepflanzte Pflanzen beeinträchtigen. Obwohl sie aus Pflanzen gewonnen werden, sind Allelochemikalien möglicherweise biologisch besser abbaubar als herkömmliche Herbizide, aber Allelochemikalien können auch unerwünschte Auswirkungen auf Nichtzielarten haben, was ökologische Studien vor einer breiten Anwendung erforderlich macht.

Es wurde auch über die selektive Wirkung von Allelochemikalien auf Nutzpflanzen und andere Pflanzen berichtet. So enthält Leucaena leucocephala, der Wunderbaum, der in Indien zur Begrünung, zum Boden- und Wasserschutz und zur Tierernährung eingesetzt wird, in seinen Blättern eine giftige, proteinfreie Aminosäure, die das Wachstum anderer Bäume hemmt, nicht aber das der eigenen Setzlinge. Leucaena-Arten verringern nachweislich den Ertrag von Weizen, steigern aber den von Reis. Ausscheidungen des Keuschbaums oder des Buchsbaums können das Wachstum von Pangolagras hemmen, aber das Wachstum von Blueste m, einem anderen Weidegras, anregen. Bei vielen invasiven Pflanzen kann die Allelopathie ein Merkmal für ihren ökologischen Erfolg sein. Eine Studie in China ergab, dass 25 von 33 untersuchten hochgradig schädlichen Unkräutern ein signifikantes allelopathisches Potenzial aufwiesen.

Zeit, Umweltbedingungen und Pflanzengewebe sind Faktoren, die zu Schwankungen der allelochemischen Konzentrationen in der Erzeugerpflanze führen. Laub- und Blattstreuauswaschungen von Eukalyptusarten sind beispielsweise für einige Nahrungspflanzen giftiger als Rindenauswaschungen. Das allelopathische Potenzial der Minirebe (Ipomoea cairica) ist bei höheren Umgebungstemperaturen deutlich größer. Eine Studie wies darauf hin, dass Bodenbiota das allelopathische Potenzial der Klebrigen Schlangenwurzel (Ageratina adenophora) verringern. Rotschwingel, der mit einem Pilz-Endophyten infiziert war, produzierte mehr allelochemische Stoffe als Pflanzen, die nicht infiziert waren.

Forschungsstrategien und mögliche Anwendungen

Der grundlegende Ansatz, der in der Allelopathie-Forschung für landwirtschaftliche Nutzpflanzen angewandt wurde, bestand darin, sowohl Nutzpflanzen als auch natürliche Vegetation auf ihre Fähigkeit zur Unterdrückung von Unkraut zu untersuchen. Um die Allelopathie nachzuweisen, müssen Ursprung, Produktion und Identifizierung der Allelochemikalien sowie die Persistenz in der Umwelt über einen längeren Zeitraum in ausreichenden Konzentrationen nachgewiesen werden, um die Pflanzenarten zu beeinflussen. Im Labor werden Pflanzenextrakte und Sickerwässer üblicherweise auf ihre Auswirkungen auf die Keimung von Samen untersucht, wobei allelochemische Stoffe aus Gewächshaustests und Feldböden isoliert und identifiziert werden, was die Laborergebnisse bestätigt. Auch die Wechselwirkungen zwischen allelopathischen Pflanzen, Wirtspflanzen und anderen Nichtzielorganismen müssen berücksichtigt werden. Außerdem kann die Allelochemie Grundstrukturen oder Vorlagen für die Entwicklung neuer synthetischer Herbizide liefern. In Studien wurden spezifische allelochemische Stoffe untersucht, die an der Unterdrückung von Unkräutern beteiligt sind, darunter Benzoxanoide in Roggen, diterpenoide Momilactone in Reis, Tabanon in Cogongrass, Alkaloide und Flavonoide in Schwingel; Anthratecton und Naphthotecton in Teak (Tectona grandis); Beta-d-Glucopyranosylester der Abscisinsäure in der Rotkiefer; Cyanamid in der Vogelwicke; und eine Cyclopropenfettsäure in der Haselsterculia (Sterculia foetida).

Die Aufnahme allelopathischer Eigenschaften von Wild- oder Kulturpflanzen in Nutzpflanzen durch traditionelle Züchtung oder gentechnische Verfahren könnte auch die Biosynthese und Freisetzung von Allelochemikalien verbessern. Die genetische Grundlage der Allelopathie wurde inzwischen bei Winterweizen und Reis nachgewiesen. In beiden Kulturen sind spezifische Sorten mit erhöhtem allelopathischem Potenzial bekannt.

Eine allelopathische Kulturpflanze kann potenziell zur Unkrautbekämpfung eingesetzt werden, indem eine Sorte mit allelopathischen Eigenschaften angebaut wird, entweder als Erstickungspflanze, in einer Fruchtfolge, oder wenn sie als Rückstand oder Mulch belassen wird, insbesondere in Niedrigsaatsystemen, um das nachfolgende Unkrautwachstum zu kontrollieren. In einer Studie hatte Roggenmulch beispielsweise eine unterdrückende Wirkung auf Ferkelkraut und Portulak, aber keine Wirkung auf Samtblatt und Gewöhnliches Kreuzblümchen. Eine Herbstbegrünung mit Futterrettich hatte eine unkrautunterdrückende Wirkung auf die Ernte der folgenden Saison. In einer mehrjährigen Feldstudie war Senfsaatmehl, das aus weißem Senf (Sinapis alba) gewonnen wurde, bei der Unkrautunterdrückung in biologisch angebauten Süßzwiebeln wirksam, schädigte aber auch die Pflanzen.

Alternativ könnte die Anwendung von allelopathischen Verbindungen vor, zusammen mit oder nach synthetischen Herbiziden die Gesamtwirkung beider Stoffe verstärken und dadurch die Einsatzmengen synthetischer Herbizide verringern. Es wurde über einige Versuche berichtet, wässrige Extrakte aus allelopathischen Pflanzen zur Unkrautbekämpfung auf Nutzpflanzen anzuwenden. In einer Studie wurde ein Extrakt aus Brassica (Brassica napus), Sorghum und Sonnenblume auf Regenweizen verwendet, um den Unkrautdruck erfolgreich zu reduzieren. Wurde ein allelopathischer Pflanzenwasserextrakt mit Atrazin in einem Tank gemischt, konnte bei Weizen mit einer geringeren Herbiziddosis ein erhebliches Maß an Unkrautbekämpfung erreicht werden. Sonnenblumenrückstände mit einem Vorpflanzenherbizid (Treflan®) verbesserten die Unkrautunterdrückung in Ackerbohnen.

Zitierte Literatur

Fraenkel, G. S. 1959. „The Raison d’Etre of Secondary Plant Substances“. Science 129: 1466-1470.

Stamp, N. 2003. „Out of the Quagmire of Plant Defense Hypotheses“. The Quarterly Review of Biology 78: 23-55.

Willis, R. J. 2010. The History of Allelopathy. Dordrecht, The Netherlands: Springer.

Additional Resources

Adler, M. J., and C. A. Chase. 2007. „Comparison of the Allelopathic Potential of Leguminous Summer Cover Crops: Cowpea, Sunn Hemp, and Velvet Bean.“ HortScience 42: 289-293.

Awan, F. K., M. Rasheed, M. Ashraf, and M. Y. Khurshid. 2012. „Efficacy of Brassica, Sorghum and Sunflower Aquesous Extracts to Control Wheat Weeds under Rainfed Conditions of Pothwar, Pakistan.“ Journal of Animal and Plant Sciences 22: 715-721.

Bangarwa, S. K., J. K. Norsworthy, and E. E. Gbur. 2012. „Effect of Turnip Soil Amendment and Yellow Nutsedge (Cyperus esculentus) Tuber Densities on Interference in Polyethylene-Mulched Tomato.“ Weed Technology 26: 364-370.

Bertholdsson, N. O., S. C. Andersson, and A. Merker. 2012. „Allelopathic Potential of Triticum spp., Secale spp. and Triticosecale spp. and Use of Chromosome Substitutions and Translocations to Improve Weed Suppression Ability in Winter Wheat.“ Plant Breeding 131: 75-80.

Brooks, A. M., D. A. Danehower, J. P. Murphy, S. C. Reberg-Horton, and J. D. Burton. 2012. „Estimation of Heritability of Benzoxazinoid Production in Rye (Secale cereale) Using Gas Chromatographic Analysis.“ Plant Breeding 131: 104-109.

Cerdeira, A. L., C. L. Cantrell, F. E. Dayan, J. D. Byrd, and S. O. Duke. 2012. „Tabanone, a New Phytotoxic Constituent of Cogongrass (Imperata cylindrica).“ Weed Science 60: 212-218.

De Bertoldi, C., M. De Leo, and A. Ercoli. 2012. „Chemical Profile of Festuca arundinacea Extract Showing Allelochemical Activity.“ Chemoecology 22: 13-21.

Ebrahimi, F., N. M. Hosseini, and M. B. Hosseini. 2012. „Effects of Herbal Extracts on Red Root Pigweed (Amaranthus retroflexus) and Lambsquarters (Chenopodium album) Weeds in Pinto Bean (Phaseolus vulgaris).“ Iranian Journal of Field Crop Science 42: 757-766.

Farooq, M., K. Jabran, Z. Cheema, A. Wahid, and H. M. K. Siddique. 2011. „The Role of Allelopathy in Agricultural Pest Management“. Pest Management Science 67: 493-506.

Golisz, A., M. Sugano, S. Hiradate, and Y. Fujii. 2011. „Microarray Analysis of Arabidopsis Plants in Response to Allelochemical L-DOPA.“ Planta 233: 231-240.

Hesammi, E., and A. Farshidi. 2012. „A Study of the Allelopathic Effect of Wheat Residue on Weed Control and Growth of Vetch (Vigna radiata L.).“ Advances in Environmental Biology 6: 1520-1522.

Khan, M. B., M. Ahmad, M. Hussain, K. Jabran, S. Farooq, and M. Waqas-Ul-Haq. 2012. „Allelopathic Plant Water Extracts Tank Mixed with Reduced Doses of Atrazine Efficiently Control Trianthema portulacastrum L. in Zea mays L.“ Journal of Animal and Plant Sciences 22: 339-346.

Kruse, M. M. Strandberg, und B. Strandberg. 2000. Ecological Effects of Allelopathic Plants: A Review. NERI Technical Report No. 315. Silkeborg, Dänemark: National Environmental Research Institute.

Inderjit, H. Evans, C. Crocoll, D. Bajpai, R. Kaur, Y. Feng, C. Silva, C. Trevino, A. Valiente-Banuet, J. Gershenzon, and R. M. Callaway. 2012. „Volatile Chemicals from Leaf Litter Are Associated with Invasiveness of a Neotropical Weed in Asia.“ Ecology 92: 316-324.

Lawley, Y. E., J. R. Teasdale, and R. R. Weil. 2012. „The Mechanism for Weed Suppression by a Forage Radish Cover Crop“. Agronomy Journal 104: 205-214.

Mbugwa, G. W., J. M. Krall, and D. E. Legg. 2012. „Interference of Tifton Burclover Residues with Growth of Burclover and Wheat Seedlings.“ Agronomy Journal 104: 982-990.

Mosjidis, J. A., and G. Wehtje. 2011. „Weed Control in Sunn Hemp and Its Ability to Suppress Weed Growth.“ Crop Protection 30: 70-73.

Neuhoff, D., and J. Range. 2012. „Unkrautbekämpfung durch Deckfruchtrückstände von Sonnenblume (Helianthus annuus) und Buchweizen (Fagopyrum esculentum) im Bio-Winterfutteranbau von Ackerbohnen.“ Journal für Kulturpflanzen 64: 229-236.

Ni, G. Y., P. Zhao, Q. Q. Huang, Y. P. Hou, C. M. Zhou, Q. P. Cao, and S. L. Peng. 2012. „Exploring the Novel Weapons Hypothesis with Invasive Plant Species in China“. Allelopathy Journal 29: 199-213.

Rani, P. U., P. Rajasekharreddy, and K. Nagaiah. 2011. „Allelopathic Effects of Sterculia foetida (L.) against Four Major Weeds.“ Allelopathy Journal 28: 179-188.

Rathinasabapathi, B., J. Ferguson, and M. Gal. 2005. „Evaluation of Allelopathic Potential of Wood Chips for Weed Suppression in Horticultural Production Systems.“ HortScience 40:711-713.

Rizvi, S. J. H., M. Tahir, V. Rizvi, R. K. Kohli, and A. Ansari. 1999. „Allelopathic Interactions in Agroforestry Systems“. Critical Reviews in Plant Sciences 18: 773-779.

Skinner, E. M., J. C. Diaz-Perez, S. C. Phatak, H. H. Schomberg, and W. Vencill. 2012. „Allelopathic Effects of Sunnhemp (Crotalaria juncea L.) on Germination of Vegetables and Weeds“. HortScience 47: 138-142.

Vazquez-de-Aldana, B. R., M. Romo, A. Garcia-Ciudad, C. Petisco, and B. Garcia-Criado. 2011. „Infection with Fungal Endophyte Epichloe festucae May Alter the Allelopathic Potential of Red Fcue.“ Annals of Applied Biology 159: 281-290.

Xu, M., R. Galhano, P. Wiemann, E. Bueno, M. Tiernan, W. Wu, I. Chung, J. Gershenzon, B. Tudzynski, A. Sesma, and R. J. Peters. 2012. „Genetic Evidence for Natural Product-Mediated Plant-Plant Allelopathy in Rice (Oryza sativa)“. New Phytologist 193: 570-575.

Zuo, S., G. Liu, and M. Li. 2012. „Genetic Basis of Allelopathic Potential of Winter Wheat Based on the Perspective of Quantitative Trait Locus.“ Field Crops Research 135: 67-73.

Tabellen

Tabelle 1.

Beispiele für Allelopathie aus der veröffentlichten Forschung.

Allelopathische Pflanze

Auswirkung

Zwischenreihen von Schwarznuss und Mais in einem Alley-Cropping-System

Reduzierter Maisertrag durch die Produktion von Juglon, einer allelopathischen Verbindung aus der Schwarznuss, die 4.25 m (~14 ft) von den Bäumen entfernt

Reihen von Leucaena, die in einem Alleeanbausystem mit Nutzpflanzen gepflanzt wurden

Reduzierten den Ertrag von Weizen und Kurkuma, erhöhten aber den Ertrag von Mais und Reis

Lantana, ein mehrjähriges holziges Unkraut, das Zitrusfrüchte in Florida schädigt

In den Boden eingearbeitete Wurzeln und Sprossen von Lantana verringerten die Keimung und das Wachstum von Milkweed, einem weiteren Unkraut

Sour Orange, eine früher häufig verwendete Zitrusunterlage, wird jetzt wegen ihrer Anfälligkeit für das Citrus tristeza-Virus gemieden

Blattextrakte und flüchtige Verbindungen hemmten die Samenkeimung und das Wurzelwachstum von Pigweed, Bermudagras und Lambsquare

Rotahorn, Sumpfkastanie, Lorbeer, und rote Zeder

Holzextrakte hemmten Salatsamen genauso stark oder stärker als Extrakte der schwarzen Walnuss

Eukalyptus und Neem-Bäume

Eine räumliche allelopathische Beziehung, wenn Weizen innerhalb von 5 m (~16.5 ft)

Keuschlüsselbaum oder Buchsbaum

Auswaschungen verzögerten das Wachstum von Pangolagras, einem Weidegras, stimulierten aber das Wachstum von Bluestem, einer anderen Grasart

Mango

Getrocknetes Mangoblattpulver hemmte das Keimen der Knollen der Purpur-Nussscharte vollständig.

Himmelsbaum

Ailanthon, isoliert aus dem Himmelsbaum, besitzt Berichten zufolge eine nicht-selektive herbizide Wirkung nach Pflanzenaufgang, die der von Glyphosat und Paraquat ähnelt

Roggen, Schwingel, und Weizen

Allelopathische Unterdrückung von Unkräutern bei Verwendung als Deckfrucht oder wenn Ernterückstände als Mulch verwendet werden

Brokkoli

Rückstände von Brokkoli beeinträchtigen das Wachstum von anderen Kreuzblütlern, die folgen

Dschungelreis

Unterdrückung der Reispflanze

Rettich

Unkrautunterdrückung durch Rückstände von Deckpflanzen Unkrautunterdrückung in der auf die Deckfrucht folgenden Saison

Jerusalem Artischocke

Rückwirkungen auf Unkrautarten

Sonnenblume und Buchweizen

Die Rückstände der Deckfrucht Unkrautdruck in Favabohnenkulturen

Tifton-Klee

Wachstumshemmung bei Weizen und Autotoxizität bei Klee

Sonnenhanf

Wachstumshemmung von Glatthafer und Kopfsalat und Hemmung der Keimung von Gemüsesamen

Wüsten-Schaumkraut (Trianthema portulacastrum)

Wachstumsförderung von Schlankem Amaranth (Amaranthus viridis)

Rhazya stricta

Wachstumshemmung von Mais

Raue Pestwurz (Xanthium strumarium)

Wachstumshemmung von Mungobohnen

Knoblauchsenf

Hemmung von arbuskulären Mykorrhizapilzen, die sich auf Zuckerahorn ansiedeln

Barbadosnuss (Jatropha curcas)

Extrakte aus Blättern und Wurzeln hemmten Mais und Tabak

Zichorie

Hemmung von Echinochloa crusgalli und Amaranthus retroflexus

Schwalben-worts

Invasive Arten im Nordosten der Vereinigten Staaten und im Südosten Kanadas; hemmt mehrere Unkrautarten

Vogel’s Tephrosia (Tephrosia vogelii)

Wachstumshemmung von Mais und drei schmalblättrigen

Wachstumshemmung von Mais und drei schmalblättrigen Unkrautarten

Kreuzkraut

Hemmung von Mais und Sonnenblumen, aber keine Hemmung von Triticale, wenn trockene Kreuzkrautreste in den Boden eingearbeitet wurden

Silberkehlchen (Acacia dealbata)

Hindernis für einheimische Arten im Unterwuchs im Nordwesten Spanien

Klebrige Schlangenwurz (Ageratina adenophora)

Volatile waren hemmend für Pflanzen in nicht-heimischennativen Bereichen, aber nicht auf Pflanzen im nativen Bereich

Santa Maria Mutterkraut (Parthenium hysterophorus)

Wässrige Extrakte hatten eine hemmende Wirkung auf Getreidepflanzen

Teakholz

Blätterextrakte hemmten Urwaldreis und Segge, aber nicht Kulturreis

Hasenfußgras

Blattextrakte und Mulch hemmten Weizen

Fußnoten

Dieses Dokument ist HS944, eines aus einer Reihe des Horticultural Sciences Department, UF/IFAS Extension. Ursprüngliches Veröffentlichungsdatum Juli 2003. Überarbeitet März 2013. Überarbeitet August 2016. Besuchen Sie die EDIS-Website unter http://edis.ifas.ufl.edu.

James J. Ferguson, emeritierter Professor; Bala Rathinasabapathi, Professor; und Carlene A. Chase, außerordentliche Professorin; Horticultural Sciences Department, UF/IFAS Extension, Gainesville, FL 32611.

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