James J. Ferguson, Bala Rathinasabapathi, e Carlene A. Chase2
Che cosa è l’allelopatia?
L’allelopatia si riferisce agli effetti benefici o dannosi di una pianta su un’altra pianta, sia specie coltivate che infestanti, dal rilascio di sostanze biochimiche, note come allelochimiche, dalle parti della pianta per lisciviazione, essudazione delle radici, volatilizzazione, decomposizione dei residui, e altri processi sia nei sistemi naturali che agricoli. Gli allelochimici sono un sottoinsieme di metaboliti secondari non richiesti per il metabolismo (crescita e sviluppo) dell’organismo allelopatico. Le sostanze allelochimiche con effetti allelopatici negativi sono una parte importante della difesa delle piante contro l’erbivoro (cioè gli animali che mangiano le piante come loro cibo primario) (Fraenkel 1959; Stamp 2003).
Il termine allelopatia deriva dai composti di origine greca allelo e pathy (che significa “danno reciproco” o “sofferenza”) e fu usato per la prima volta nel 1937 dallo scienziato austriaco Hans Molisch nel libro Der Einfluss einer Pflanze auf die andere – Allelopathie (The Effect of Plants on Each Other) (Willis 2010). Studiata per la prima volta nei sistemi forestali, l’allelopatia può influenzare molti aspetti dell’ecologia delle piante, tra cui la comparsa, la crescita, la successione delle piante, la struttura delle comunità vegetali, la dominanza, la diversità e la produttività delle piante. Inizialmente, molte delle specie forestali valutate avevano effetti allelopatici negativi sulle colture alimentari e da foraggio, ma negli anni ’80 è stata avviata la ricerca per identificare le specie che avevano effetti benefici, neutri o selettivi sulle piante da compagnia (Tabella 1). Le prime ricerche sono nate da osservazioni di scarsa rigenerazione delle specie forestali, danni alle colture, riduzioni della resa, problemi di reimpianto per le colture arboree, la comparsa di zone senza erbacce e altri cambiamenti correlati nei modelli di vegetazione. Il nostro scopo qui è di introdurre il concetto di allelopatia, citare esempi specifici e menzionare le potenziali applicazioni come strategia alternativa di gestione delle infestanti.
Natura dell’allelopatia
Gli effetti comunemente citati dell’allelopatia includono una ridotta germinazione dei semi e la crescita delle piantine. Come gli erbicidi sintetici, non esiste una modalità comune di azione o un sito di destinazione fisiologico per tutti gli allelochimici. Tuttavia, i siti noti di azione per alcuni allelochimici includono la divisione cellulare, la germinazione del polline, l’assorbimento dei nutrienti, la fotosintesi e la funzione di enzimi specifici. Per esempio, uno studio che ha esaminato l’effetto di un allelochimico noto nel velvetbean, 3-(3′,4′-diidrossifenil)-l-alanina (l-DOPA), ha indicato che l’inibizione da questo composto è dovuta a effetti negativi sul metabolismo degli aminoacidi e sull’equilibrio della concentrazione del ferro.
L’inibizione allelopatica è complessa e può coinvolgere l’interazione di diverse classi di sostanze chimiche, come composti fenolici, flavonoidi, terpenoidi, alcaloidi, steroidi, carboidrati e aminoacidi, con miscele di diversi composti che talvolta hanno un effetto allelopatico maggiore dei singoli composti da soli. Inoltre, gli stress fisiologici e ambientali, i parassiti e le malattie, le radiazioni solari, gli erbicidi e i livelli di nutrienti, umidità e temperatura meno che ottimali possono anche influenzare la soppressione allelopatica delle erbacce. Diverse parti della pianta, compresi i fiori, le foglie, la lettiera e la pacciamatura delle foglie, i fusti, la corteccia, le radici, il suolo, i percolati del suolo e i loro composti derivati, possono avere un’attività allelopatica che varia durante una stagione di crescita. I prodotti chimici allelopatici o allelochimici possono anche persistere nel suolo, influenzando sia le piante vicine che quelle piantate in successione. Anche se derivate dalle piante, le sostanze allelochimiche possono essere più biodegradabili degli erbicidi tradizionali, ma le sostanze allelochimiche possono anche avere effetti indesiderati su specie non bersaglio, rendendo necessari studi ecologici prima di un uso diffuso.
Sono state riportate anche attività selettive delle sostanze allelochimiche degli alberi su colture e altre piante. Per esempio, Leucaena leucocephala, l’albero miracoloso promosso per la rivegetazione, la conservazione del suolo e dell’acqua e l’alimentazione del bestiame in India, contiene un aminoacido tossico non proteico nelle sue foglie che inibisce la crescita di altri alberi ma non le sue stesse piantine. È stato anche dimostrato che le specie di Leucaena riducono la resa del grano ma aumentano quella del riso. I percolati dell’albero del casto o del sambuco del bosso possono ritardare la crescita del pangolagrass ma stimolare la crescita del blueste m, un’altra erba da pascolo. Molte piante invasive possono avere l’allelopatia come caratteristica per il loro successo ecologico. Uno studio in Cina ha trovato che 25 delle 33 erbacce altamente nocive esaminate avevano un potenziale allelopatico significativo.
Il tempo, le condizioni ambientali e il tessuto della pianta sono tutti fattori che determinano variazioni nelle concentrazioni allelochimiche nella pianta produttrice. I percolati fogliari e della lettiera delle specie di Eucalipto, per esempio, sono più tossici dei percolati della corteccia per alcune colture alimentari. Il potenziale allelopatico della vite miglio-un-minuto (Ipomoea cairica) è significativamente maggiore a temperature ambientali più elevate. Uno studio ha indicato che il biota del suolo ha ridotto il potenziale allelopatico della snakeroot appiccicosa (Ageratina adenophora). La festuca rossa infettata da un endofita fungino ha prodotto più sostanze allelochimiche rispetto alle piante non infette.
Strategie di ricerca e potenziali applicazioni
L’approccio di base utilizzato nella ricerca allelopatica per le colture agricole è stato quello di esaminare sia le piante coltivate che la vegetazione naturale per la loro capacità di sopprimere le erbacce. Per dimostrare l’allelopatia, l’origine della pianta, la produzione e l’identificazione delle sostanze allelochimiche devono essere stabilite così come la persistenza nell’ambiente nel tempo in concentrazioni sufficienti per influenzare le specie vegetali. In laboratorio, gli estratti e i percolati delle piante vengono comunemente esaminati per i loro effetti sulla germinazione dei semi, con un ulteriore isolamento e identificazione degli allelochimici dai test in serra e sul suolo del campo, confermando i risultati di laboratorio. Devono essere considerate anche le interazioni tra le piante allelopatiche, le colture ospiti e altri organismi non bersaglio. Inoltre, l’allelochimica può fornire strutture di base o modelli per sviluppare nuovi erbicidi sintetici. Gli studi hanno chiarito specifiche sostanze allelochimiche coinvolte nella soppressione delle erbacce, compresi i benzoxanoidi nella segale; i diterpenoidi momilattoni nel riso; il tabanone nella cogongrass; alcaloidi e flavonoidi nella festuca; anthratectone e naphthotectone nel teak (Tectona grandis); estere beta-d-glucopiranosyl dell’acido abscisico nel pino rosso; cianamide nella veccia pelosa; e un acido grasso ciclopropenico nella sterculia nocciola (Sterculia foetida).
L’incorporazione di tratti allelopatici da piante selvatiche o coltivate in piante coltivate attraverso l’allevamento tradizionale o metodi di ingegneria genetica potrebbe anche migliorare la biosintesi e il rilascio di sostanze allelochimiche. La base genetica dell’allelopatia è stata dimostrata nel grano invernale e nel riso. In entrambe queste colture sono note cultivar specifiche con un maggiore potenziale allelopatico.
Una coltura allelopatica può essere potenzialmente usata per controllare le erbacce piantando una varietà con qualità allelopatiche, sia come coltura soffocante, in una sequenza a rotazione, o se lasciata come residuo o pacciame, specialmente in sistemi a bassa lavorazione, per controllare la successiva crescita delle erbacce. Per esempio, in uno studio, il pacciame di segale ha avuto effetti soppressivi su pigweed e portulaca comune, ma non ha avuto effetti su velvetleaf e lambsquarters comune. Una coltura di copertura autunnale di ravanello da foraggio ha avuto effetti di soppressione delle erbacce sul raccolto della stagione successiva. In uno studio di campo multistagione, quando applicata come modifica del suolo, la farina di semi di senape derivata dalla senape bianca (Sinapis alba) è stata efficace per la soppressione delle erbacce nella cipolla dolce biologica, ma anche il danno al raccolto è stato significativo.
In alternativa, l’applicazione di composti allelopatici prima, insieme a, o dopo gli erbicidi sintetici potrebbe aumentare l’effetto complessivo di entrambi i materiali, riducendo così i tassi di applicazione degli erbicidi sintetici. Sono stati riportati alcuni tentativi di applicazione di estratti acquosi di piante allelopatiche sulle colture per la soppressione delle erbacce. In uno studio, un estratto di brassica (Brassica napus), sorgo e girasole è stato usato sul grano coltivato a pioggia per ridurre con successo la pressione delle erbacce. Quando un estratto di acqua di piante allelopatiche è stato miscelato con l’atrazina, è stato raggiunto un grado significativo di controllo delle infestanti nel grano con una dose ridotta di erbicida. I residui di girasole con un erbicida preimpianto (Treflan®) hanno migliorato la soppressione delle erbacce nelle fave.
Letteratura citata
Fraenkel, G. S. 1959. “La ragion d’essere delle sostanze vegetali secondarie”. Scienza 129: 1466-1470.
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Risorse aggiuntive
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Tabelle
Esempi di allelopatia dalla ricerca pubblicata.
Pianta allelopatica |
Impatto |
File di noce nero interpiantate con mais in un sistema di coltivazione in alley |
Riduzione della resa del mais attribuita alla produzione di juglone, un composto allelopatico dal noce nero, trovato a 4.25 m (~14 ft) dagli alberi |
File di Leucaena interpiantate con colture in un sistema di alley cropping |
Riducevano la resa di grano e curcuma ma aumentavano la resa di mais e riso |
Lantana, un’erbaccia legnosa perenne negli agrumi della Florida |
Le radici e i germogli di Lantana incorporati nel suolo hanno ridotto la germinazione e la crescita della vite milkweed, un’altra erbaccia |
Arancio acido, un portainnesto di agrumi ampiamente usato in passato, ora evitato a causa della suscettibilità al virus tristeza degli agrumi |
Gli estratti di foglie e i composti volatili inibiscono la germinazione dei semi e la crescita delle radici di pigweed, bermudagrass e lambsquarters |
Acero rosso, quercia castagno di palude, alloro dolce, e cedro rosso |
Gli estratti di legno hanno inibito i semi di lattuga quanto o più degli estratti di noce nera |
Eucalipto e neem |
Un rapporto allelopatico spaziale se il grano veniva coltivato entro 5 m (~16.5 ft) |
Albero di castagno o sambuco di bosso |
I leucati ritardavano la crescita del pangolagrass, un’erba da pascolo, ma stimolavano la crescita del bluestem, un’altra specie di erba |
Mango |
La polvere di foglie di mango essiccate ha completamente inibito la germinazione dei tuberi di noce rossa. |
Albero del cielo |
Ailantone, isolato dall’albero del cielo, è stato segnalato per possedere un’attività erbicida postemergenza non selettiva simile a glifosato e paraquat |
Segale, festuca, e grano |
Suppressione allelopatica delle erbacce quando vengono usate come colture di copertura o quando i residui delle colture vengono trattenuti come pacciamatura |
Raccoli |
I residui di broccoli interferiscono con la crescita di altre colture crucifere che seguono |
Riso jungle |
Inibizione della coltura del riso |
Radano da foraggio |
La soppressione dei residui di colture da copertura di erbacce nella stagione successiva alla coltura di copertura |
Carcio di Gerusalemme |
Effetti residuali sulle specie infestanti |
Girasole e grano saraceno |
I residui della coltura di copertura residui di colture hanno ridotto la pressione delle erbacce nella coltura della fava |
Tifton burclover |
Inibizione della crescita nel grano e autotossicità nel burclover |
Sunn canapa |
Inibizione della crescita del porcellino liscio e della lattuga e inibizione della germinazione dei semi vegetali |
Cavalletta del deserto (Trianthema portulacastrum) |
Promozione della crescita dell amaranto (Amaranthus viridis) |
Rhazya stricta |
Inibizione della crescita del mais |
Barbara rossa (Xanthium strumarium) |
Inibizione della crescita del fagiolo mungo |
Senape all’aglio |
Inibizione dei funghi micorrizici arbuscolari che colonizzano l’acero da zucchero |
Dado delle Barbados (Jatropha curcas) |
Estratti di foglie e radici hanno inibito mais e tabacco |
Cicoria |
Inibizione di Echinochloa crusgalli e Amaranthus retroflexus |
Swallow-worts |
Specie invasive nel nord-est degli Stati Uniti e nel sud-est del Canada; inibisce diverse specie di erbacce |
Tefrosia di Vogel (Tephrosia vogelii) |
Inibizione della crescita del mais e di tre speciedi tre specie di erbacce a foglia stretta |
Inibizione dell’euforbia verde |
Inibizione del cece |
Erba di granchio |
Inibizione del mais e del girasole ma nessuna inibizione del triticale quando il residuo secco di erba di granchio viene suolo |
Acacia dealbata (Acacia dealbata) |
Inibizione delle specie native del sottobosco nel nord-ovest della Spagna |
Sticky snakeroot (Ageratina adenophora) |
I volatili erano inibitori per le piante in aree nonnativo, ma non inibitorio per le piante in quello nativo |
Pastore di Santa Maria (Parthenium hysterophorus) |
Estratti acquosi hanno avuto effetti inibitori sulle colture di cereali |
Legno di tek |
Gli estratti di foglie hanno inibito il riso della giungla e la carice, ma non il riso coltivato |
L’erba dei piedi di coniglio |
Gli estratti di foglie e il pacciame inibivano il grano |
Note ai piedi
Questo documento è HS944, uno di una serie del Dipartimento di Scienze Orticole, UF/IFAS Extension. Data di pubblicazione originale luglio 2003. Rivisto marzo 2013. Rivisto agosto 2016. Visita il sito web EDIS a http://edis.ifas.ufl.edu.
James J. Ferguson, professore emerito; Bala Rathinasabapathi, professore; e Carlene A. Chase, professore associato; Horticultural Sciences Department, UF/IFAS Extension, Gainesville, FL 32611.
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