James J. Ferguson, Bala Rathinasabapathi, et Carlene A. Chase2
Qu’est-ce que l’allélopathie ?
L’allélopathie désigne les effets bénéfiques ou nocifs d’une plante sur une autre plante, qu’il s’agisse d’espèces cultivées ou de mauvaises herbes, à partir de la libération de produits biochimiques, appelés produits allélochimiques, par les parties de la plante par lixiviation, exsudation racinaire, volatilisation, décomposition des résidus et autres processus dans les systèmes naturels et agricoles. Les produits allélochimiques sont un sous-ensemble de métabolites secondaires qui ne sont pas nécessaires au métabolisme (croissance et développement) de l’organisme allélopathique. Les produits allochimiques ayant des effets allélopathiques négatifs constituent une partie importante de la défense des plantes contre l’herbivorie (c’est-à-dire les animaux qui mangent des plantes comme nourriture principale) (Fraenkel 1959 ; Stamp 2003).
Le terme allélopathie provient des composés d’origine grecque allelo et pathy (signifiant » dommage mutuel » ou » souffrance « ) et a été utilisé pour la première fois en 1937 par le scientifique autrichien Hans Molisch dans le livre Der Einfluss einer Pflanze auf die andere – Allelopathie (L’effet des plantes les unes sur les autres) (Willis 2010). D’abord largement étudiée dans les systèmes forestiers, l’allélopathie peut affecter de nombreux aspects de l’écologie végétale, notamment la présence, la croissance, la succession végétale, la structure des communautés végétales, la dominance, la diversité et la productivité des plantes. Au départ, un grand nombre des espèces forestières évaluées avaient des effets allélopathiques négatifs sur les cultures vivrières et fourragères, mais dans les années 1980, des recherches ont été entreprises pour identifier les espèces qui avaient des effets bénéfiques, neutres ou sélectifs sur les plantes des cultures compagnes (tableau 1). Les premières recherches sont nées de l’observation de la faible régénération des espèces forestières, des dommages causés aux cultures, des baisses de rendement, des problèmes de replantation des cultures arboricoles, de l’apparition de zones sans mauvaises herbes et d’autres changements connexes dans la structure de la végétation. Notre objectif ici est d’introduire le concept d’allélopathie, de citer des exemples spécifiques et de mentionner les applications potentielles en tant que stratégie alternative de gestion des mauvaises herbes.
Nature de l’allélopathie
Les effets couramment cités de l’allélopathie incluent une réduction de la germination des graines et de la croissance des semis. Comme les herbicides synthétiques, il n’y a pas de mode d’action commun ou de site cible physiologique pour tous les produits allélopathiques. Cependant, les sites d’action connus de certains produits allélopathiques comprennent la division cellulaire, la germination du pollen, l’absorption des nutriments, la photosynthèse et la fonction enzymatique spécifique. Par exemple, une étude qui a examiné l’effet d’un produit allochimique connu chez le velouté, la 3-(3′,4′-dihydroxyphényl)-l-alanine (l-DOPA), a indiqué que l’inhibition par ce composé est due à des effets néfastes sur le métabolisme des acides aminés et l’équilibre de la concentration en fer.
L’inhibition allélopathique est complexe et peut impliquer l’interaction de différentes classes de produits chimiques, tels que les composés phénoliques, les flavonoïdes, les terpénoïdes, les alcaloïdes, les stéroïdes, les glucides et les acides aminés, les mélanges de différents composés ayant parfois un effet allélopathique plus important que les composés individuels seuls. En outre, les stress physiologiques et environnementaux, les ravageurs et les maladies, le rayonnement solaire, les herbicides, ainsi que des niveaux de nutriments, d’humidité et de température non optimaux peuvent également affecter la suppression allélopathique des mauvaises herbes. Différentes parties de plantes, y compris les fleurs, les feuilles, la litière de feuilles et le paillis de feuilles, les tiges, l’écorce, les racines, le sol, les lixiviats du sol et leurs composés dérivés, peuvent avoir une activité allélopathique qui varie au cours d’une saison de croissance. Les produits chimiques allélopathiques ou allélochimiques peuvent également persister dans le sol, affectant aussi bien les plantes voisines que celles plantées successivement. Bien qu’ils soient dérivés de plantes, les produits chimiques allélopathiques peuvent être plus biodégradables que les herbicides traditionnels, mais les produits chimiques allélopathiques peuvent également avoir des effets indésirables sur les espèces non ciblées, ce qui nécessite des études écologiques avant une utilisation généralisée.
L’activité sélective des produits chimiques allélopathiques des arbres sur les cultures et d’autres plantes a également été signalée. Par exemple, Leucaena leucocephala, l’arbre miracle promu pour la revégétalisation, la conservation des sols et de l’eau, et la nutrition du bétail en Inde, contient un acide aminé non protéique toxique dans ses feuilles qui inhibe la croissance d’autres arbres mais pas celle de ses propres semis. Il a également été démontré que les espèces de Leucaena réduisent le rendement du blé mais augmentent celui du riz. Les lixiviats du gattilier ou du sureau peuvent retarder la croissance du pangolagrass mais stimuler celle du blueste m, une autre herbe de pâturage. L’allélopathie peut être une caractéristique de la réussite écologique de nombreuses plantes envahissantes. Une étude menée en Chine a révélé que 25 des 33 mauvaises herbes très nocives examinées avaient un potentiel allélopathique significatif.
Le temps, les conditions environnementales et les tissus végétaux sont autant de facteurs qui font varier les concentrations allélopathiques dans la plante productrice. Les lixiviats foliaires et de la litière des espèces d’Eucalyptus, par exemple, sont plus toxiques que les lixiviats d’écorce pour certaines cultures alimentaires. Le potentiel allélopathique de la vigne « mile-a-minute » (Ipomoea cairica) est significativement plus élevé à des températures environnementales plus élevées. Une étude a indiqué que le biote du sol réduisait le potentiel allélopathique de l’amélanchier (Ageratina adenophora). La fétuque rouge infectée par un endophyte fongique a produit plus de produits allélopathiques que les plantes qui n’étaient pas infectées.
Stratégies de recherche et applications potentielles
L’approche de base utilisée dans la recherche allélopathique pour les cultures agricoles a été de cribler à la fois les plantes cultivées et la végétation naturelle pour leur capacité à supprimer les mauvaises herbes. Pour démontrer l’allélopathie, il faut établir l’origine, la production et l’identification des produits allochimiques par les plantes, ainsi que leur persistance dans l’environnement au fil du temps à des concentrations suffisantes pour affecter les espèces végétales. En laboratoire, les extraits de plantes et les lixiviats sont généralement analysés pour leurs effets sur la germination des graines, puis les substances allélomimiques sont isolées et identifiées à partir de tests en serre et de sols de terrain, ce qui confirme les résultats obtenus en laboratoire. Les interactions entre les plantes allélopathiques, les cultures hôtes et les autres organismes non ciblés doivent également être prises en compte. En outre, l’allélochimie peut fournir des structures de base ou des modèles pour le développement de nouveaux herbicides synthétiques. Des études ont permis d’élucider des substances allélochimiques spécifiques impliquées dans la suppression des mauvaises herbes, notamment les benzoxanoïdes dans le seigle, les momilactones diterpénoïdes dans le riz, la tabanone dans le cogongrass, les alcaloïdes et les flavonoïdes dans la fétuque ; l’anthratectone et la naphtotectone chez le teck (Tectona grandis) ; l’ester bêta-d-glucopyranosylique de l’acide abscissique chez le pin rouge ; le cyanamide chez la vesce velue ; et un acide gras cyclopropénique chez le sterculia du noisetier (Sterculia foetida).
L’incorporation de traits allélopathiques de plantes sauvages ou cultivées dans les plantes cultivées par des méthodes traditionnelles de sélection ou de génie génétique pourrait également améliorer la biosynthèse et la libération de produits allélopathiques. La base génétique de l’allélopathie a maintenant été démontrée chez le blé d’hiver et le riz. Des cultivars spécifiques avec un potentiel allélopathique accru sont connus dans ces deux cultures.
Une culture allélopathique peut potentiellement être utilisée pour contrôler les mauvaises herbes en plantant une variété avec des qualités allélopathiques, soit comme une culture d’étouffement, dans une séquence de rotation, ou lorsqu’elle est laissée comme un résidu ou un paillis, en particulier dans les systèmes de travail réduit du sol, pour contrôler la croissance ultérieure des mauvaises herbes. Par exemple, dans une étude, le paillis de seigle a eu des effets suppressifs sur l’amarante et le pourpier commun, mais n’a eu aucun effet sur l’abutilon et le chénopode blanc. Une culture de couverture automnale de radis fourrager a eu des effets de suppression des mauvaises herbes sur la culture de la saison suivante. Dans une étude sur le terrain portant sur plusieurs saisons, lorsqu’elle était appliquée comme amendement du sol, la farine de graines de moutarde dérivée de la moutarde blanche (Sinapis alba) était efficace pour la suppression des mauvaises herbes dans l’oignon doux biologique, mais les dommages à la culture étaient également significatifs.
Alternativement, l’application de composés allélopathiques avant, avec ou après les herbicides synthétiques pourrait augmenter l’effet global des deux matériaux, réduisant ainsi les taux d’application des herbicides synthétiques. Certaines tentatives ont été rapportées sur l’application d’extraits aqueux de plantes allélopathiques sur les cultures pour la suppression des mauvaises herbes. Dans une étude, un extrait de brassica (Brassica napus), de sorgho et de tournesol a été utilisé sur du blé cultivé sous pluie pour réduire avec succès la pression des mauvaises herbes. Lorsqu’un extrait aqueux de plante allélopathique a été mélangé en cuve avec de l’atrazine, un degré significatif de contrôle des mauvaises herbes a été atteint dans le blé avec une dose réduite d’herbicide. Les résidus de tournesol avec un herbicide de préplantation (Treflan®) ont amélioré la suppression des mauvaises herbes dans la fève.
Littérature citée
Fraenkel, G. S. 1959. « La raison d’être des substances végétales secondaires ». Science 129 : 1466-1470.
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Ressources supplémentaires
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Tables
Exemples d’allélopathie issus de recherches publiées.
Plante allélopathique |
Impact |
|
Rangs de noyers noirs intercalés avec du maïs dans un système de culture en couloir |
Rendement réduit du maïs attribué à la production de juglone, un composé allélopathique du noyer noir, trouvé à 4.25 m (~14 ft) des arbres |
|
Rangs de Leucaena intercalés avec des cultures dans un système de culture en couloir |
Réduit le rendement du blé et du curcuma mais augmente le rendement du maïs et du riz |
|
Lantana, une mauvaise herbe ligneuse vivace nuisible aux agrumes de Floride |
Les racines et les pousses de lantana incorporées au sol ont réduit la germination et la croissance de la vigne asclépiade, une autre mauvaise herbe |
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L’orange aigre, un porte-greffe d’agrumes largement utilisé dans le passé, maintenant évité en raison de sa sensibilité au virus de la tristeza des agrumes |
Les extraits de feuilles et les composés volatils ont inhibé la germination des graines et la croissance des racines de l’amarante, de l’herbe à bermudes et des chénopodes |
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L’érable rouge, le chêne châtaignier des marais, le laurier doux, et cèdre rouge |
Les extraits de bois ont inhibé les graines de laitue autant ou plus que les extraits de noyer noir |
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Eucalyptus et margousiers |
Une relation allélopathique spatiale si le blé était cultivé à moins de 5 m (~16.5 ft) |
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Chastetier ou sureau |
Les lixiviats retardaient la croissance du pangolagrass, une herbe de pâturage, mais stimulaient la croissance du bluestem, une autre espèce de graminée |
|
Mangue |
La poudre de feuilles de mangue séchées a complètement inhibé la germination des tubercules de souchet pourpre. |
|
Arbre du paradis |
L’ailanthone, isolée de l’arbre du paradis, aurait une activité herbicide non sélective en post-levée similaire à celle du glyphosate et du paraquat |
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Seigle, fétuque, et le blé |
Suppression allélopathique des mauvaises herbes lorsqu’elles sont utilisées comme cultures de couverture ou lorsque les résidus de culture sont conservés comme paillis |
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Brocoli |
Les résidus de brocoli interfèrent avec la croissance d’autres crucifères qui suivent |
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Riz mondé |
Inhibition de la culture du riz |
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Radish bourrache |
Résidus de culture de couverture supprimant les mauvaises herbes dans la saison suivant la culture de couverture |
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Jerusalem artichaut |
Effets résiduels sur les espèces de mauvaises herbes |
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Sunflower et sarrasin |
Les résidus de cultures de couverture Les résidus de culture ont réduit la pression des mauvaises herbes dans la culture de la féverole |
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Tifton burclover |
Inhibition de la croissance du blé et autotoxicité du burclover |
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Sunn hemp |
Inhibition de la croissance de l’amarante lisse et de la laitue et inhibition de la germination des graines de légumes |
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Spurgeons du désert (Trianthema portulacastrum) |
Promotion de la croissance de l’amarante grêle amarante (Amaranthus viridis) |
|
Rhazya stricta |
Inhibition de la croissance du maïs |
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Carabosse rugueuse (Xanthium strumarium) |
Inhibition de la croissance du haricot mungo |
. du haricot mungo |
Moutarde à l’ail |
Inhibition des champignons mycorhiziens à arbuscules colonisant l’érable à sucre |
|
Noix des Caraïbes (Jatropha curcas) |
Les extraits de feuilles et de racines ont inhibé le maïs et le tabac |
|
Chicorée |
Inhibition d’Echinochloa crusgalli et d’Amaranthus retroflexus |
|
Mauvaises herbes-worts |
Espèce envahissante dans le nord-est des États-Unis et le sud-est du Canada ; a inhibé plusieurs espèces de mauvaises herbes |
|
Téphrosie de Vogel (Tephrosia vogelii) |
Inhibition de la croissance du maïs et de trois espèces de mauvaises herbes à feuilles étroites |
. |
L’euphorbe verte |
Inhibition du pois chiche |
|
L’herbe à crabe |
Inhibition du maïs et du tournesol mais pas d’inhibition du triticale lorsque des résidus secs d’herbe à crabe sont incorporés au sol |
. sol |
Silver wattle (Acacia dealbata) |
Inhibition des espèces indigènes de sous-bois dans le nord-ouest de l’Espagne. Espagne |
|
Sticky snakeroot (Ageratina adenophora) |
Les volatiles étaient inhibiteurs pour les plantes dans les aires nonnon indigènes mais non inhibitrices pour les plantes indigènes |
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La grande camomille de Santa Maria (Parthenium hysterophorus) |
Des extraits aqueux ont eu des effets extraits ont eu des effets inhibiteurs sur les cultures céréalières |
|
Bois de teck |
Les extraits de feuilles ont inhibé le riz de jungle et le carex, mais pas le riz cultivé |
|
L’herbe à pied de lapin |
Les extraits de feuilles et le paillis ont inhibé le blé |
Notes de bas de page
Ce document est HS944, une d’une série du département des sciences horticoles, UF/IFAS Extension. Date de publication originale juillet 2003. Révisé en mars 2013. Révisé en août 2016. Visitez le site Web EDIS à http://edis.ifas.ufl.edu.
James J. Ferguson, professeur émérite ; Bala Rathinasabapathi, professeur ; et Carlene A. Chase, professeur associé ; Département des sciences horticoles, UF/IFAS Extension, Gainesville, FL 32611.
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